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    基因组DNA快速提取试剂盒(N1111-N1112)

    促销: 572.00~1021.00
    运费 ¥0.00
    N1111(50次) N1112(100次)

    基因组DNA快速提取试剂盒(硅胶膜离心柱法)

    产品组分

     

    货号

    N1111

    50次)

    N1112

    100次)

    消化缓冲液DS

    15 ml

    30 ml

    裂解液MS

    20 ml

    40 ml

    蛋白酶K20mg/ml

    1 ml

    2 ml

    去蛋白液PS

    30 ml

    60 ml

    漂洗液PE

    15 ml

    30 ml

    纯化液TE

    5 ml

    10 ml

    DNA纯化柱

     50

     100

    说明书

    1

    1

     

    裂解液MS中含变性剂,请不要直接接触皮肤。

    漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,

    即含75%乙醇。

    产品说明

    本产品可用于昆虫、线虫、动物等样本的基因组DNA纯化。纯化原理是利用细胞裂解液裂解细胞核释放基因组DNA,由硅胶膜柱可逆吸附体系中的基因组DNA,经蛋白酶K消化、漂洗液清洗除去蛋白质、脂质以及多糖等杂质,用纯化液洗脱获得基因组DNA。一次可从不超过10 mg组织材料中提取到3-35 μg的高纯度基因组DNAOD260/OD280=1.7-1.9),此基因组DNA可直接用于PCR、酶切等后续实验。

     

    质量控制

    纯化的基因组DNA质量通过限制性酶切和单拷贝基因的PCR扩增鉴定。

     

    保存条件

    蛋白酶K室温运输,于-20保存,避免反复冻融。

    其余试剂置于室温(15-25)干燥条件下保存1年。

    如果消化缓冲液DSMS中有沉淀,可在55加热溶解,待恢复室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA的纯化效率。

     

    注意事项--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

    漂洗液PE第一次使用前请按瓶上标签加入3倍体积的无水乙醇,即15 ml漂洗液PE加入45 ml无水乙醇,30 ml漂洗液PE加入90 ml无水乙醇,使用后立即盖紧盖子。

    消化缓冲液DS和裂解液MS室温保存可能会有沉淀产生,在55℃加热溶解,待恢复至室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA纯化效率。

    应尽量使用新鲜的实验材料,确保提取的基因组DNA不被降解。不能立刻提取基因组DNA 的实验材料应尽快置于液氮或-80℃冰箱中保存并避免反复冻融。

    使用液氮研磨组织材料时,应随时加入液氮,确保提取的基因组DNA不被降解。

    基因组DNA需长期保存时,建议使用纯化液TE。用无菌的离心管分装后保存于-20℃-80℃。

    所有离心步骤均为室温下进行。

    请严格按照操作步骤操作。

     

    操作步骤--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

    取少量样本材料,放入液氮预冷的研钵中??焖儆昧ρ心サ耐奔尤肷倭恳旱?,直至样本材料被研磨成粉末。将研磨好的样本转移至1.5 ml离心管中,每管组织材料含量应不超过10 mg。

    如没有液氮,可用剪刀剪成小块,放入研钵或匀浆器中,加入适量TEpH 8.0),处理成细胞悬液。将不超过10 mg当量的细胞悬液转移至一个新的1.5 ml的离心管中,12,000 rpm离心1min,弃上清,收集沉淀。

        每只离心管中的样本当量不宜超过10 mg。每10 mg样本材料可获得10 μg基因组DNA。样本量过大,将会影响细胞核裂解效率并可能堵塞纯化柱,进而降低基因组DNA的得率与纯度。

    加入200 μl消化缓冲液DS,涡旋振荡至形成完全均一的悬浮液。

        如需去除RNA,可加入4 μl RNase A100 mg/ml,N9042),振荡15秒,室温放置5min。

    加入20 μl蛋白酶K,混匀,55℃水浴或金属浴,至组织完全溶解,通常需要1-3小时。对特别难溶解的组织如尾巴、昆虫可放置过夜。

    加入220 μl裂解液MS,涡旋振荡混匀。65℃温浴10min。溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠,室温放置5min使溶液冷却。

        加入裂解液MS时可能会产生白色沉淀,一般65℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯。       

    加入220 μl无水乙醇,上下颠倒混匀。此时可能出现絮状沉淀。简短离心以去除管盖内壁的水珠。将溶液及絮状沉淀转移到纯化柱中。12,000 rpm离心1min,弃滤液。

       若溶液体积大于纯化柱容积(700 μl),可分两次离心。

    此时基因组DNA被吸附于DNA纯化柱中的硅胶膜上。

    加入500 μl去蛋白液PS,12,000 rpm离心1min,弃滤液。

      此步骤的作用是去除硅胶膜上吸附的蛋白、脂质等杂质,以获得高质量基因组DNA。

    加入500μl漂洗液PE,12,000 rpm离心1min,弃滤液。

      漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,即含75%乙醇。

    加入500 μl漂洗液PE,12,000 rpm离心1min,弃滤液。

    9  12,000 rpm离心3min,以彻底去除纯化柱中残留的液体。

        此步骤的作用是去除残留乙醇,避免影响后续的酶促反应(PCR或酶切)。同时利于基因组DNA充分溶解。

    10  将纯化柱置于新的1.5 ml离心管中。向纯化柱中央处,悬空滴加30-100μl洗脱液TE。室温放置2min。

    11  12,000 rpm离心2min,管底即为高纯度基因组DNA。-20℃保存。

        洗脱液TE可用去离子水代替,但其pH需为8.0-8.5。

    对洗脱液TE 65℃预热,会提高基因组DNA的产量。


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